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Für die Definition aquivalenter Sterilisationsverfahren under andere Kombination von Temperatur und Behandlungszeit. Anpassung an hitzeempfindliche Produkte.
Die Abtötungskurve der Mikroorganismen in einem Sterilisationsprozess folgt der Kinetik 1. Ordnung.
Abtötungskurve auf Basis "10", nicht "e".
Integration zwischen den Werten N0 und N sowie den dazugehörigen Zeiten t0
Auswaschen eines innerten Stoffes (o. überflüssiger nicht-wachsender Biomasse)
Beginn der Störung bei t=0
Der D-Wert entspricht dem reziproken Wert von KT
Verdünnungsrate in Abhängigkeit vom Volumenstrom und Volumen
spezifische Wachstumsrate in Chemostatkultur
Verdünnungsrate in der Chemostatkultur in Abhängigkeit von der Substratkonzentration und der maximalen spezifischen Wachstumsrate
Veränderung der Biomassekonzentration mit der Zeit (Differenzialgleichung)
Veränderung der Substratkonzentration mit der Zeit (Differenzialgleichung)
allgemeine Bilanzgleichung für einen Durchflussreaktor
allgemeine Bilanzgleichung für eine Batchkultur
Biomassebildungsrate in Batchkultur
F-Wert
F0-Wert
Substrataffinitäts-/Sättigungskonstante (Monod)
Substrataffinitäts-/Sättigungskonstante (Monod)
Letalitätsfaktor, Berechnung der Letalität und der Effektivität eines Sterilisationsprozesses.
??????
spezifische Wachstumsarte in Abhängigkeit von der Substratkonzentration nach Monod-Kinetik
spezifische Wachstumsrate bei zeitlicher Veränderung von V(t)
spezifische Wachstumsrate für Batchkultur
spezifische Wachstumsrate zu einem bestimmten Zeitpunkt
maximale spezifische Wachstumsrate für Ks << s(t) in Batchkultur
maximale spezifische Wachstumsrate für Ks << s(t) in Batchkultur
spezifische Substratverbrauchsrate in Chemostatkultur
spezifische Substratverbrauchsrate in Chemostatkultur
spezifische Substratverbrauchsrate in Batchkultur
Enzymbildungsrate (Enzymproduktivität) in Chemostatkultur
Enzymbildungsrate (Enzymproduktivität) in Chemostatkultur
Substratbildungsrate
Biomassebildungsrate in Chemostatkultur (Biomasseproduktivität)
Biomassebildungsrate in Batchkultur
Substratkonzentration in Abhängigkeit von der Verdünnungsrate mit Berücksichtigung eines Absterbens von Zellen
Substratkonzentration in der Chemostatkultur als Funktion der Verdünnungsrate
Substratkonzentration in der Chemostatkultur als Funktion der Verdünnungsrate
Einwaschen von Substrat (ohne Wachstum) Beginn der Störung bei t=0
Verlauf der Substratkonzentration im Auswasch-Versuch
Beginn der Störung bei t=0
Substratkonzentrationsverlauf in Batchkultur für Ks << s(t)
Dauer der Batchkultivierung
Dauer der Batchkultivierung
Zeitpunkt t, bei welchem x(t) während der Batchkultivierung erreicht wird
Verdopplungszeit
Anzahl Volumenwechsel in einem kontinuierlichen Rührkessel
Biomassemenge in Batchkultur bei zeitlicher Veränderung von V(t)
Anfangsbiomassekonzentration in Batchkultur
Anfangsbiomassekonzentration in Batchkultur
Anfangsbiomassekonzentration in Batchkultur
Anfangsbiomassekonzentration in Batchkultur
Anfangsbiomassekonzentration in Batchkultur
Zeitverlauf der Biomassekonzentration für Ks << s(t) in Batchkultur
Zeitverlauf der Biomassekonzentration für Ks << s(t) in Batchkultur
Biomassekonzentration in Chemostatkulturen in Abhängigkeit von den Substratkonzentrationen
Biomassekonzentration in der Chemostatkultur als Funktion der Verdünnungsrate
Biomasseproduktivität in der Chemostatkultur als Funktion der Verdünnungsrate
Biomassekonzentration in Abhängigkeit von der Verdünnungsrate mit Berücksichtigung eines Absterbens von Zellen
Auswaschen von Biomasse (inkl. Wachstum mit µmax)
Beginn der Störung bei t=0
Ausbeutekoeffizient (yield)
Ausbeutekoeffizient für limitierenden Nährstoff in Chemostatkultur
z-Wert
 
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References



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Blank, L. M. 1997. Molecular and fermentation characterization of recombinant strains for metabolic engineering studies of Clostridium acetobutylicum. Master Thesis. Northwestern University, Evanston, IL, USA.
Cereghino, J.L., and J.M. Cregg. 2000. Heterologous protein expression in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. FEMS Microbiol. Rev. 24: 45-66.
483 kBpdf
Curvers, S., P. Brixius, T. Klauser, J. Thoemmes, B.D. Weuster, R. Takors, and C. Wandrey. 2001. Human chymotrypsinogen B production with Pichia pastoris by integrated development of fermentation and downstream processing. Part 1. Fermentation. Biotechnol. Prog. 17: 495-502.
213 kBpdf
d’Anjou, M.C., and A.J. Daugulis. 2001. A rational approach to improving productivity in recombinant Pichia pastoris fermentation. Biotechnol. Bioeng. 72: 1–11.
214 kBpdf
Desai, R.P., L.K. Nielsen, and E.T. Papoutsakis. 1999. Stoichiometric modeling of Clostridium acetobutylicum fermentations with non-linear constraints. J. Biotechnol. 71:191-205.
230 kBpdf
Egli, T., Bosshard, C., and G. Hamer. 1986. Simultaneous utilization of methanol-glucose mixtures by Hansenula polymorpha in chemostat: Influence of dilution rate and mixture composition on utilization pattern. Biotechnol. Bioneng. 28: 1734-1741.
903 kBpdf
Egli, T., J.P. van Dijken, M. Veenhuis, W. Harder, and A. Fiechter. 1980. Methanol Metabolism in Yeasts: Regulation of the Synthesis of Catabolic Enzymes. Arch. Microbiol. 124: 115-121.
1777 kBpdf
Hans-Peter Meyer, 7. Juni 2007
1307 kBpdf
Harris, L.M., L. Blank, R.P. Desai, N.E. Welker, and E.T. Papoutsakis. 2001. Fermentation characterization and flux analysis of recombinant strains of Clostridium acetobutylicum with an inactivated solR gene. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 27: 322-328.
167 kBpdf
Ihssen, J., and T. Egli. 2004. Specific growth rate and not cell density controls the general stress response in Escherichia coli. Microbiol. 150: 1637 – 1648.
319 kBpdf
Invitrogen. 2002. Pichia Fermentation Process Guidelines. Catalog No. K1710-01, Version B 053002, 1-11. http://www.invitrogen.com/content/sfs/manuals/pichiaferm_prot.pdf
162 kBpdf
Kayser, A., J. Weber, V. Hecht, and U. Rinas. 2005. Metabolic flux analysis of Escherichia coli in glucose-limited continuous culture. I. Growth-rate-dependent metabolic efficiency at steady state. Microbiol. 151: 693 - 706.
226 kBpdf
Kovářová, K., A.J.B. Zehnder, and T. Egli. 1996. Temperature-Dependent Growth Kinetics of Escherichia coli ML 30 in Glucose-Limited Continuous Culture. J. Bacteriol. 178: 4530-4539.
340 kBpdf
Kovarova-Kovar, K., and T. Egli. 1998. Growth Kinetics of Suspended Microbial cells: From Single-Substrate-Controlled Growth to Mixed-Substrate Kinetics. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62: 646–666.
2980 kBpdf
Lendenmann, U., H. Senn, M. Snozzi, and T. Egli. 2000. Dynamics of Mixed Substrate Growth of Escherichia coli in Batch Culture: the Transition between Simultaneous and Sequential Utilisation of Carbon Substrates. Acta Univ. Carol. Environ. 14: 21-31.
2509 kBpdf
Maurer, M., M., Kühleitner, B. Gasser, and D. Mattanovich. 2006. Versatile modeling adn optimization of fed  batch processes for the production of secreted heterologous proteins with Pichia pastoris. Microbial Cell Factories. 5: 37.
323 kBpdf
Minning, S., A. Serrano, P. Ferrer, C. Solá, R.D. Schmid, and F. Valero. 2001. Optimization of the high-level production of Rhizopus oryzae lipase in Pichia pastoris. J. Biotechnol. 86: 59–70.
196 kBpdf
Monod, J. 1949.The growth of bacterial cultures. Annu. Rev. Microbiol. 3: 371-394.
1380 kBpdf
Papoutsakis, E.T. 1984. Equations and Calculations for Fermentations of Butyric Acid Bacteria. Biotechnol. Bioeng. XXVI: 174-187.
1295 kBpdf
Piñar, G., K. Kovářová, T. Egli, and J.L. Ramos. 1998. Influence of Carbon Source on Nitrate Removal by Nitrate tolerant Klebsiella oxytoca CECT 4460 in Batch and Chemostat Cultures. Appl. Env. Microbiol. 64: 2970 - 2976. 
2073 kBpdf
Standing, C.N., A.G. Frederickson, and H.M. Tschuchiya. 1972. Batch and continuous-culture transients for two substrate systems. Appl. Microbiol. 23: 354-359.
699 kBpdf
Tao, H., C. Bausch, C. Richmond, F.R. Blattner, and T. Conway. 1999. Functional Genomics: Expression Analysis of Escherichia coli. Growing on Minimal and Rich Media. J. Bacteriol. 181: 6425 - 6440.
1787 kBpdf
van Dijken, J.P., Otto, R., and W. Harder. 1976. Growth of Hansenula polymorpha in a methanol-limited chemostat. Arch. Microbiol. 111: 137-144.
1375 kBpdf
Varma, A., and B.O. Palsson. 1994. Stoichiometric Flux Balance Models Quantitatively Predict Growth and Metabolic By-Product Secretion in Wild-Type Escherichia coli W3110. Appl. Environ. Microbiol. 60: 3724-3731.
1398 kBpdf
von Meyenburg, K. 1971. Transport-Limited Growth Rates in a Mutant of Escherichia coli. J. Bacteriol. 107: 878-888.
1371 kBpdf
Wanner, U., and T. Egli. 1990. Dynamics of microbial growth and cell composition in batch culture. FEMS Microbiol. Rev. 75: 19-44.
3208 kBpdf
Zhang, W., J. Sinha, L. A. Smith, M. Inan, and M.M. Meagher. 2005. Maximization of production of secreted recombinant proteins in Pichia pastoris fed batch fermentation. Biotechnol. Prog. 21: 386-393.
195 kBpdf
 
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